Інформація

ПЛР і великомасштабна ПЛР

ПЛР і великомасштабна ПЛР


We are searching data for your request:

Forums and discussions:
Manuals and reference books:
Data from registers:
Wait the end of the search in all databases.
Upon completion, a link will appear to access the found materials.

Я провів ПЛР з 50 мкл, яка показала чітку смугу в гель-електрофорезі. Потім я провів широкомасштабну ПЛР з 3650 мкл, яка показала нечітку смугу в гель-електрофорезі. Що може бути причиною цього? Чи може це бути втрата плазміди, навіть якщо є смуга, але дуже нечітка? Слід зазначити, що разова ПЛР проводилася влітку, а масштабна – зараз


Я зробив масштабну пробірку в пробірці Falcon, а потім перемістив суміш у пробірки для ПЛР, кожна з яких містить 50 мкл, тому умови ПЛР повинні бути такими ж, як і для ампліфікації окремої ПЛР.

Якщо всі концентрації реагенту та умови циклічного циклу однакові, я підозрюю, що ви недостатньо змішали свою реакцію великого об’єму перед дозуванням аліквот по 50 мкл.

Слід зазначити, що разова ПЛР проводилася влітку, а масштабна – зараз

Якщо ви використовували одні й ті самі полімерази та праймери для реакцій малого та великого об’єму, чи належним чином зберігалися запаси в проміжний період? Рекомбінантні ДНК-полімерази в гліцеринових буферах мають термін зберігання від місяців до років залежно від специфікацій постачальника та умов зберігання, хоча слід очікувати деякого зниження активності через кілька місяців.


Порівняльна оцінка комерційного набору та двох розроблених у лабораторії ПЛР-аналізів для молекулярної діагностики вродженого токсоплазмозу

Токсоплазмоз – це всесвітня інфекція, яка може спричинити серйозні захворювання та вважається серйозною проблемою здоров’я у Франції. Виявлення паразита молекулярними методами має вирішальне значення для діагностики захворювання. Надзвичайне різноманіття методів і ефективності ПЛР-аналізів на токсоплазму робить використання комерційних наборів для ПЛР привабливою альтернативою, оскільки вони дають шанс для стандартизації. Ми порівняли ефективність трьох молекулярних методів для виявлення ДНК Toxoplasma gondii в амніотичній рідині: комерційного методу з використанням гніздової ПЛР та двох розроблених у лабораторії методів, один з яких використовує звичайну ПЛР, а інший — ПЛР у реальному часі. Ця оцінка була заснована на аналізі серійного розведення ДНК T. gondii, трьох зразках амніотичної рідини, доповнених T. gondii у різних концентраціях, і клінічній когорті з 33 зразків навколоплідних вод. Аналіз серійного розведення ДНК T. gondii показав набагато нижчу чутливість для комерційного набору, ніж для методів, розроблених у лабораторії. Крім того, з 12 доведених випадків вродженого токсоплазмозу 91,7% були виявлені за допомогою лабораторних аналізів, тоді як лише 50% були виявлені за допомогою комерційного набору. Основним недоліком комерційного методу була недостатня чутливість методу, частково через наявність інгібіторів ПЛР. Це дослідження підкреслює, що комерційні діагностичні набори для ПЛР систематично не працюють краще, ніж ретельно оптимізовані лабораторно розроблені методи. Існує потреба в ретельній оцінці таких наборів кваліфікованими групами, а також у стандартах ефективності, з якими можна було б протестувати комерційні набори, щоб підвищити довіру до тих, які вибирають постачальники медичних послуг.


Параметри доступу

Отримайте повний доступ до журналу на 1 рік

Усі ціни є цінами НЕТТО.
ПДВ буде додано пізніше під час оформлення замовлення.
Розрахунок податку буде завершено під час оформлення замовлення.

Отримайте обмежений за часом або повний доступ до статті на ReadCube.

Усі ціни є цінами НЕТТО.


PCR Biosystems розробляє та виготовляє набори для ПЛР та реагенти для молекулярно-біологічних досліджень та діагностики. Після більш ніж 20-річного досвіду роботи в індустрії співзасновники Марк Стівенс і Алекс Вілсон заснували компанію в 2012 році з метою зробити речі по-іншому. У центрі уваги було створення високоефективних ПЛР-реагентів, які спрощують дослідження клієнтів, і точних компонентів для підтримки партнерів у розробці їх діагностичного аналізу.

Тепер, через дев’ять років, PCR Biosystems має портфоліо реагентів, розроблених з використанням запатентованих аналізів і технології інтелектуального екрану, що охоплює широкий спектр застосування ПЛР. Важливо, що PCR Biosystems також працює за системою управління якістю, сертифікованою за стандартом ISO 13485:2016, що означає, що продукти та процеси відповідають міжнародним стандартам для виробництва компонентів медичних виробів.

Під час пандемії в центрі уваги була ПЛР. Розкажіть про свій новий продукт qPCRBIO Probe 1-Step Virus Detect, як відбувся його запуск і для чого його можна використовувати.

Алекс: «QPCRBIO Probe 1-Step Virus Detect був запущений на початку пандемії, спеціально для підтримки високопродуктивного тестування на SARS-CoV-2 (вірус, відповідальний за COVID-19). Цей продукт являє собою набір високої концентрації 4x RT-qPCR, розроблений для швидкого та точного виявлення послідовностей вірусної РНК. Все, що потрібно, це додати спеціальні праймери та зонди разом з екстрактом тампона та водою. Ключовою перевагою для користувачів є можливість додавати більше зразків до своїх реакцій для підвищення аналітичної чутливості, навіть при роботі з реакціями невеликого обсягу.

Розробляючи qPCRBIO Probe 1-Step Virus Detect, ми прагнемо запропонувати дослідникам і виробникам діагностичних наборів гнучкість у розробці їх аналізів і повну впевненість у якості та точності отриманих результатів».

Як ще PCR Biosystems допомогла підтримати боротьбу з COVID-19?

Алекс: «Як ви можете собі уявити, попит на швидкі та надійні реагенти зріс у міру серйозності кризи. Окрім qPCRBIO Probe 1-Step Virus Detect, наш портфель до пандемії вже включав ряд продуктів, які можна було використовувати для тестування на COVID-19, і ми негайно розширили виробництво цих критично важливих реагентів.

Щоб підтримати масове тестування, ми представили основні розміри наших ключових продуктів, забезпечивши узгодженість, зручність і цінність для високопродуктивного тестування клінічних зразків. Крім того, ми перевірили наш діапазон qPCRBIO Probe 1-Step для якісного виявлення нуклеїнової кислоти SARS-CoV-2, використовуючи рекомендовані Charité, Berlin і CDC послідовності праймер-зонда (гени RdRp, E і N). Підтримка клієнтів із технічними знаннями щодо розробки та розширення аналізів була ще одним ключовим напрямком нашої команди протягом останнього року.

У середині пандемії ми почали поставляти наш індивідуальний інгібітор РНКази Riboshield™ як незалежний продукт. Цей реагент захищає РНК і може стабілізувати РНК-мішені, такі як SARS-CoV-2, у зразках, тим самим забезпечуючи надійні результати діагностики.

Зовсім недавно ми запустили IsoFast™ Bst 1-Step Mix, що забезпечує альтернативний метод ПЛР для ампліфікації та аналізу вірусної РНК. Завдяки своїм можливостям витіснення ланцюга нуклеїнової кислоти Bst-полімераза усуває необхідність високотемпературної денатурації, пов’язаної з традиційними ферментами Taq. Це дозволяє швидше отримати результат і полегшує недороге виявлення в польових умовах без спеціалізованого термоциклічного обладнання».

Хоча багато ланцюгів поставок були порушені через пандемію, як PCR Biosystems продовжує нарощувати та оптимізувати операції, щоб забезпечити безперервне постачання?

Алекс: «З моменту спалаху пандемії ми взяли на себе зобов’язання забезпечити дослідникам і організаціям на всіх ринках доступ до продуктів і послуг ПЛР, які їм потрібні. Спритність і швидке реагування сприяли нашій здатності виконувати кожне замовлення реагентів, отримане протягом цього часу, — чим я неймовірно пишаюся.

Завдяки нашому плануванню на випадок надзвичайних ситуацій ми негайно впровадили змінну роботу для виробництва, складання та виконання замовлень і мали три окремі групи, які працювали сім днів на тиждень, а дві повністю навчені комерційні групи були в резерві для забезпечення оперативної підтримки.

Ми значно розширили виробництво реагентів RT-qPCR і скерували наших клієнтів до масових форматів, усвідомлюючи неминучий дефіцит пластикового посуду. Відмінні відносини з постачальниками були вирішальними, а розширення не тільки нашого бізнесу, але й наших критично важливих постачальників є важливим кроком у цьому процесі.

Завдяки нашим розширеним виробничим потужностям, великим запасам, потужності для подальшого розширення та значному збільшенню нашої команди експертів з ПЛР ми змогли виконати наше зобов’язання щодо безперебійного постачання реагентів, і ми маємо хороші можливості для вирішення будь-яких майбутній сплеск попиту».

Яке майбутнє чекає на PCR Biosystems?

Алекс: «Ми амбітні щодо наших майбутніх планів – інвестувати великі кошти в наші дослідження та розробки та розвивати великий набір продуктів. Довгострокове бачення, як для нинішньої пандемії, так і після неї, полягає в тому, щоб полегшити доступ до діагностичних та молекулярних реагентів, які забезпечують стабільність і надійність, особливо для застосування в пунктах надання допомоги. З цією метою ми незабаром запускаємо серію реагентів для ПЛР Lyo-Ready. Ці продукти можна ліофілізувати – процес сушіння до твердої форми, що полегшує транспортування та зберігання, збільшує термін служби продукту та забезпечує більшу гнучкість об’єму зразка.

Ми також продовжуватимемо розширювати наше партнерство з дистрибуції та співпрацю з діагностики протягом 2021 року та далі. У боротьбі за реагенти для тестування на COVID-19 ми знаємо, що деякі регіони не змогли отримати необхідні матеріали від своїх постачальників. Ми отримали значну користь від високодосвідченої дистриб’юторської мережі, яка підтримує клієнтів із потребами в реагентах у 39 країнах. Наша відданість забезпеченню глобальних систем охорони здоров’я необхідними продуктами та досвідом залишатиметься незмінною в майбутньому PCR Biosystems».

Для отримання додаткової інформації зв’яжіться зі штаб-квартирою у Великобританії за номером + 44 (0) 20 3930 8101, електронною поштою [email protected] або відвідайте www.pcrbio.com

Зверніть увагу: це комерційний профіль

© 2019. Цей твір має ліцензію a Ліцензія CC BY 4.0.


Експерименти на основі запитів для широкомасштабного введення в ПЛР та рестрикційні ферменти

Адреса для листування: кафедра хімії, Університет Ксав'єра Луїзіани, 1 Drexel. Доктор, Новий Орлеан, LA 70125, США. Електронна пошта: [email protected] [email protected] .Шукати більше робіт цього автора

Кафедра хімії, Університет Ксав'єра Луїзіани, 1 Drexel. Доктор, Новий Орлеан, Луїзіана, 70125

KEJ та TJW зробили однаковий внесок у цю роботу.

Адреса для листування: кафедра хімії, Університет Ксав’єра Луїзіани, 1 Drexel. Доктор, Новий Орлеан, LA 70125, США. Електронна пошта: [email protected] [email protected] .Шукати більше робіт цього автора

Хімічний факультет, Університет Ксав'єра Луїзіани, 1 Drexel. Доктор, Новий Орлеан, Луїзіана, 70125

KEJ та TJW зробили однаковий внесок у цю роботу.

Адреса для листування: кафедра хімії, Університет Ксав’єра Луїзіани, 1 Drexel. Доктор, Новий Орлеан, LA 70125, США. Електронна пошта: [email protected] [email protected] .Шукати більше робіт цього автора

Кафедра хімії, Університет Ксав'єра Луїзіани, 1 Drexel. Доктор, Новий Орлеан, Луїзіана, 70125

KEJ та TJW зробили однаковий внесок у цю роботу.

Адреса для листування: кафедра хімії, Університет Ксав'єра Луїзіани, 1 Drexel. Доктор, Новий Орлеан, LA 70125, США. Електронна пошта: [email protected] [email protected] .Шукати більше робіт цього автора

Анотація

Полімеразна ланцюгова реакція та розщеплення ендонуклеазою рестрикції є важливими методиками, які мають бути включені в усі навчальні програми лабораторій з біохімії та молекулярної біології. Ці методики часто викладаються на просунутому рівні, що вимагає багато годин студентського та викладача. Тут ми представляємо два експерименти на основі запитів, які призначені для вступних лабораторних курсів і поєднують обидві методики. В обох підходах студенти повинні визначити ідентичність невідомої послідовності ДНК, або послідовність гена, або послідовність праймера, на основі комбінації розміру продукту ПЛР та шаблону рестрикційного розщеплення. Експериментальний дизайн є гнучким і може бути адаптований на основі наявного часу підготовки викладача та ресурсів, і обидва підходи можуть вмістити велику кількість студентів. Ми впровадили ці експерименти на наших курсах із загальною кількістю 584 студентів і досягли 85% успіху. Загалом, студенти продемонстрували краще розуміння експериментальних тем, здатність інтерпретувати отримані дані та володіти загальними лабораторними навичками. © 2015 Міжнародний союз біохімії та молекулярної біології, 43:441–448, 2015.

Додаткову додаткову інформацію можна знайти в онлайн-версії цієї статті.

Зверніть увагу: видавець не несе відповідальності за зміст або функціональність будь-якої допоміжної інформації, наданої авторами. Будь-які запити (крім відсутнього вмісту) слід направляти до відповідного автора статті.


Широкомасштабна ПЛР-валідація в реальному часі на основі вимірювань експресії генів з двох комерційних довгих олігонуклеотидних мікрочипів

Фон: Мікрочипи ДНК швидко стають фундаментальним інструментом у геномних та біомедичних дослідженнях на основі відкриттів. Однак достовірність результатів мікрочіпів піддається сумніву через існування різних технологій та нестандартних методів аналізу та інтерпретації даних. За відсутності «золотого стандарту»/«референтного методу» для вимірювання експресії генів дослідження, що оцінюють та порівнюють продуктивність різних платформ мікрочіпів, часто дають суб’єктивні та суперечливі висновки. Щоб вирішити цю проблему, ми провели широкомасштабний ПЛР-експеримент TaqMan Gene Expression Assay в реальному часі та використали цей набір даних як еталон для оцінки продуктивності двох репрезентативних комерційних платформ мікрочипів.

Результати: У цьому дослідженні ми проаналізували профілі експресії генів трьох тканин людини: мозку, легенів, печінки та одного універсального еталонного зразка людини (UHR), використовуючи дві репрезентативні комерційні платформи мікрочипів із довгими олігонуклеотидами: (1) Applied Biosystems Human Genome Survey Microarrays (на основі при одноколірному детектуванні) (2) Олігомікроматриці всього людського геному Agilent (на основі двоколірного виявлення). 1375 генів, представлених обома платформами мікрочіпів і що охоплюють широкий динамічний діапазон рівнів експресії генів, були відібрані для перевірки експресії генів TaqMan на основі ПЛР у реальному часі. Для кожної платформи було виконано чотири технічні повторення на тих самих зразках РНК відповідно до стандартних протоколів кожного виробника. Для масивів Agilent порівняльну гібридизацію проводили з використанням включення Cy5 для РНК мозку/легенів/печінки та Cy3 для РНК UHR (загальне посилання). Використовуючи набір даних ПЛР у реальному часі на основі TaqMan Gene Expression Assay як еталонний набір, продуктивність двох платформ мікрочіпів була оцінена за наступними критеріями: (1) Чутливість і точність у виявленні експресії (2) Кореляція кратної зміни з Дані ПЛР у реальному часі в парних тканинах, а також у профілях експресії генів, визначених у всіх тканинах (3) Чутливість і точність у виявленні диференціальної експресії.

висновок: Наше дослідження надає один з найбільших «референтних» даних вимірювань експресії генів за допомогою технології ПЛР у реальному часі на основі аналізу експресії генів TaqMan. Цей набір даних дозволив нам використовувати альтернативну технологію експресії генів для оцінки продуктивності різних платформ мікрочипів. Ми робимо висновок, що мікрочипи справді є безцінними інструментами відкриття з прийнятною надійністю для скринінгу геномної експресії, хоча перевірка передбачуваних змін у експресії генів залишається доцільною. Наше дослідження також характеризує обмеження мікрочіпів, оскільки розуміння цих обмежень дозволить дослідникам ефективніше оцінювати результати мікрочіпів більш обережно та належним чином.


Реагенти та ферменти для ПЛР

Дізнайтеся про історію ПЛР, міркування щодо налаштування, важливість вибору ДНК-полімерази, поширені методи та застосування, а також усунення несправностей.


Подяки

Ми дякуємо А. Боему за розуміння та лабораторну підтримку в Стенфорді Р. Мартоне та Л. Сасубре за корисні розмови про експериментальний дизайн Офелі К. Ромеро-Мараччіні, М. Маттіолі та Д. Лі за технічну підтримку О. Шелтону, Дж. Самхурі , G. Williams, S. Hennessey, A. Stier, B. Feist та P. Levin за відповідні аналітичні дискусії та підтримку на місцях R. Morris та V. Armbrust за розуміння та лабораторну підтримку в UW та Центрі Helen R. Whiteley в Friday Harbor Laboratories за підтримку письмового семінару, який суттєво вдосконалив цей продукт. Ця робота була підтримана грантом від Фонду Девіда і Люсіль Пакард.


Як високоякісна полімераза гарантує, що вставлено правильну основу?

ДНК-полімерази високої точності мають кілька запобіжних заходів для захисту як від помилок, так і від їх поширення під час копіювання ДНК. Такі ферменти мають значну перевагу зв’язування правильного проти неправильного нуклеозидтрифосфату під час полімеризації. Якщо неправильний нуклеотид зв’язується в активному центрі полімерази, включення сповільнюється через неоптимальну архітектуру комплексу активного центру. Цей час затримки збільшує можливість дисоціації неправильного нуклеотиду до прогресування полімерази, що дозволяє розпочати процес заново з правильного нуклеозидтрифосфату (1,2). Якщо вставлено неправильний нуклеотид, ДНК-полімерази для коректури мають додаткову лінію захисту (Малюнок 1). Виявлено збурення, спричинене неправильним збігом основ, і полімераза переміщує 3´ кінець зростаючого ланцюга ДНК у коректуючий 3&rarr5´ екзонуклеазний домен. Там неправильний нуклеотид видаляється під дією екзонуклеазної активності 3&rarr5´, після чого ланцюг повертається в полімеразний домен, де полімеризація може продовжуватися.


Посилання

Хакетт Дж.Л., Леско Л.Д.: Дані мікрочіпів – FDA США, промисловість та наукові кола. Nat Biotechnol. 2003, 21 (7): 742-743. 10.1038/nbt0703-742.

Petricoin EF, Hackett JL, Lesko LJ, Puri RK, Gutman SI, Chumakov K, Woodcock J, Feigal DWJ, Zoon KC, Sistare FD: Медичне застосування технологій мікрочіпів: перспектива нормативної науки. Нат Жене. 2002, 32 Доп.: 474-479. 10.1038/ng1029.

Рамасвамі С.: Переведення геноміки раку в клінічну онкологію. N Engl J Med. 2004, 350 (18): 1814-1816. 10.1056/NEJMp048059.

Shi L, Tong W, Goodsaid F, Frueh FW, Fang H, Han T, Fuscoe JC, Casciano DA: QA/QC: проблеми та підводні камені, з якими стикається співтовариство мікрочіпів і регуляторні органи. Експерт Rev Mol Diag. 2004, 4 (6): 761-777. 10.1586/14737159.4.6.761.

Irizarry RA, Warren D, Spencer F, Kim IF, Biswal S, Frank BC, Gabrielson E, Garcia JG, Geoghegan J, Germino G, Griffin C, Hilmer SC, Hoffman E, Jedlicka AE, Kawasaki E, Martinez-Murillo F, Morsberger L, Lee H, Petersen D, Quackenbush J, Scott A, Wilson M, Yang Y, Ye SQ, Yu W: Багатолабораторне порівняння платформ мікрочіпів. Методи Nat. 2005, 2 (5): 345-350. 10,1038/nmeth756.

Ларкін JE, Frank BC, Gavras H, Sultana R, Quackenbush J: Незалежність і відтворюваність на платформах мікрочипів. Методи Nat. 2005, 2 (5): 337-344. 10,1038/nmeth757.

Rogojina AT, Orr WE, Song BK, Geisert EEJ: Порівняння використання Affymetrix з плямистими олігонуклеотидними мікрочипами з використанням двох ліній пігментного епітелію сітківки. Мол Віс. 2003, 9: 482-496.

Shi L, Tong W, Fang H, Scherf U, Han J, Puri RK, Frueh FW, Goodsaid FM, Guo L, Su Z, Han T, Fuscoe JC, Xu ZA, Patterson TA, Hong H, Xie Q, Perkins RG , Chen JJ, Casciano DA: кросплатформна порівнянність технології мікрочіпів: узгодженість всередині платформи та відповідні процедури аналізу даних є важливими. Біоінформатика BMC. 2005, 6 Додаток 2: S12-10.1186/1471-2105-6-S2-S12.

Shippy R, Sendera TJ, Lockner R, Palaniappan C, Kaysser-Kranich T, Watts G, Alsbrook J: Оцінка продуктивності комерційних короткоолігонуклеотидних мікрочипів і вплив шуму на створення міжплатформних кореляцій. BMC Genomics. 2004, 5 (1): 61-10.1186/1471-2164-5-61.

Tan PK, Downey TJ, Spitznagel ELJ, Xu P, Fu D, Dimitrov DS, Lempicki RA, Raaka BM, Cam MC: Оцінка вимірювань експресії генів з комерційних платформ мікрочіпів. Нуклеїнові кислоти Res. 2003, 31 (19): 5676-5684. 10,1093/nar/gkg763.

Яук К.Л., Берндт М.Л., Вільямс А., Дуглас Г.Р.: Комплексне порівняння шести технологій мікрочіпів. Нуклеїнові кислоти Res. 2004, 32 (15): e124-10.1093/nar/gnh123.

Mackay IM, Arden KE, Nitsche A: ПЛР у реальному часі у вірусології. Нуклеїнові кислоти Res. 2002, 30 (6): 1292-1305. 10.1093/nar/30.6.1292.

Вонг М.Л., Медрано Дж.Ф.: ПЛР у реальному часі для кількісного визначення мРНК. Біотехніка. 2005, 39 (1): 75-85.

Арья М., Шергіл І.С., Вільямсон М., Гоммерсолл Л., Арья Н., Патель Х.Р.: Основні принципи кількісної ПЛР у реальному часі. Експерт Rev Mol Diag. 2005, 5 (2): 209-219. 10.1586/14737159.5.2.209.

Вільгельм Дж, Пінгуд А: Полімеразна ланцюгова реакція в реальному часі. Chembiochem. 2003, 4 (11): 1120-1128. 10.1002/cbic.200300662.

Pietrzyk MC, Banas B, Wolf K, Rummele P, Woenckhaus M, Hoffmann U, Kramer BK, Fischereder M: кількісний аналіз експресії генів фракталкіну за допомогою лазерного мікродисекції в біопсіях з алотрансплантатів нирки з гострим відторгненням. Transplant Proc. 2004, 36 (9): 2659-2661. 10.1016/j.transproceed.2004.09.029.

де Кок JB, Roelofs RW, Giesendorf BA, Pennings JL, Waas ET, Feuth T, Swinkels DW, Span PN: Нормалізація вимірювань експресії генів у тканинах пухлини: порівняння 13 ендогенних контрольних генів. Lab Invest. 2005, 85 (1): 154-159.

Hughes TR, Mao M, Jones AR, Burchard J, Marton MJ, Shannon KW, Lefkowitz SM, Ziman M, Schelter JM, Meyer MR, Kobayashi S, Davis C, Dai H, He YD, Stephaniants SB, Cavet G, Walker WL , West A, Coffey E, Shoemaker DD, Stoughton R, Blanchard AP, Friend SH, Linsley PS: Профілювання експресії за допомогою мікромасивів, виготовлених за допомогою струминного синтезатора олігонуклеотидів. Nat Biotechnol. 2001, 19 (4): 342-347. 10.1038/86730.

Стефано Г.Б., Беррілл Дж.Д., Лабур С., Блейк Дж., Кадет П.: Регуляція різних генів у лейкоцитах людини, що піддаються гострому впливу морфіну: аналіз на мікрочипах експресії. Med Sci Monit. 2005, 11 (5): MS35-42.

Zhao JR, Bai YJ, Zhang QH, Wan Y, Li D, Yan XJ: Виявлення ДНК вірусу гепатиту B за допомогою ПЛР у реальному часі з використанням технології TaqMan-MGB. Світ J Гастроентерол. 2005, 11 (4): 508-510.

Ян Д.К., Квеон Ч., Кім Б.Х., Лім С.І., Кім Ш., Квон Дж.Х., Хан Х.Р.: Полімеразна ланцюгова реакція з зворотною транскрипцією TaqMan для виявлення вірусу японського енцефаліту. J Vet Sci. 2004, 5 (4): 345-351.

Раджагопалан Д.: Порівняння статистичних методів для аналізу даних масиву олігонуклеотидів високої щільності. Біоінформатика. 2003, 19 (12): 1469-1476. 10.1093/біоінформатика/btg202.

Bolstad BM, Irizarry RA, Astrand M, Speed ​​TP: порівняння методів нормалізації для даних масиву олігонуклеотидів високої щільності на основі дисперсії та зміщення. Біоінформатика. 2003, 19 (2): 185-193. 10.1093/біоінформатика/19.2.185.

Smyth GK, Speed ​​T: Нормалізація даних мікрочипів кДНК. Методи. 2003, 31 (4): 265-273. 10.1016/S1046-2023(03)00155-5.

Huber W, von Heydebreck A, Sultmann H, Poustka A, Vingron M: Стабілізація дисперсії, застосована до калібрування даних мікрочіпів і кількісної оцінки диференціального вираження. Біоінформатика. 2002, 18 Додаток 1: S96-104.

Фосетт Т.: Графіки ROC: примітки та практичні міркування для дослідників. Технічний звіт HPL-2003-4, HP Laboratories. 2004, [http://home.comcast.net/

Чемберс JM, Hastie TH: Статистичні моделі. 1992, С. Уодсворт і Брукс/Коул, Пасифік-Гроув, Каліфорнія


Перегляньте відео: ПЛР Аналіз COVID 19 (Липень 2022).


Коментарі:

  1. Corann

    Я думаю, ти помиляєшся. Я пропоную це обговорити. Напишіть мені на вечора, ми поговоримо.

  2. Kazrara

    Я видалив цю фразу

  3. Pelops

    Я вважаю, що ви робите помилку. Пропоную це обговорити. Пишіть мені в ПМ, поговоримо.

  4. Home

    Ви не праві. Я впевнений. Я можу захистити свою позицію.

  5. Amadi

    Зараз я не можу взяти участь у дискусії - вільного часу немає. Я вийду - я обов'язково висловлю свою думку з цього питання.



Напишіть повідомлення